Щёлочная вода приготовление в домашних условиях

Приготовление мазков крови. Мазки крови и цитологические препараты готовят на хорошо обезжиренных и чистых предметных стеклах с ровной, без царапин и шероховатостей поверхностью. Последние недостатки отражаются на качестве мазка (неравномерность распределения форменных элементов, оседание краски и т. д.). Новые стекла протирают щеткой в теплой мыльной воде и промывают в проточной воде. Стекла, бывшие в употреблении, после механической очистки в теплой мыльной воде выдерживают в течение нескольких дней в хромовой смеси (100 г хромовокислого калия растворяют в 1 л горячей воды и постепенно подливают 100 г серной кислоты).
От кедрового масла стекла очищают бензином или ксилолом. После прополаскивания в проточной воде их вытирают чистой сухой тряпочкой и помещают в банку со смесью, где равное количество спирта и эфира.
Перед работой стекла вынимают из банки пинцетом, насухо вытирают чистой полотняной тряпочкой и упаковывают по 10—20 шт. в пергаментную бумагу. Стекла надо брать только за короткие ребра, не касаясь поверхности пальцами, чтобы не оставлять жирных пятен.
Каплю крови для приготовления мазка снимают с места разреза, прикасаясь поверхностью предметного стекла, или берут углом шлифованного стекла и переносят па предметное стекло. При работе с капилляром па предметное стекло лучше наносить небольшую каплю. Последняя должна быть соразмерена так, чтобы мазок помещался па стекле, не доходя 1 см до его узких концов. Если капля слишком велика, мазки получаются очень толстыми, неравномерными и, не обрываясь, доходяг до конца стекла. Если же капля мала, то мазки получаются короткими, прерываются, имеют выступы и оканчиваются длинными язычками.
Кровь по возможности нужно использовать для приготовления мазка сразу же, пока она не потеряла физических свойств, до наступления процесса ее свертывания.
Для приготовления мазка в левую руку берут предметное стекло и зажимают сто короткие ребра между большим и средним пальцами. Маленькую каплю крови наносят на правый конец стекла. Копчиками большого и указательною пальцев правой руки берут за длинные ребра шлифованное стекло, ближе к ею концу. Шлифованное стекло ставят впереди капли под углом 45° и надвигают на него до тех пор, пока капля не соприкоснется с ним и не растечется по его краю. После этого шлифованное стекло под тем же углом быстро проводят по предметному стеклу вперед так, чтобы кровь непрерывно и равномерно тянулась за краем шлифованного стекла. Шлифованное стекло следует отнимать от предметного стекла не ранее чем на левом конце. При этом бугорки пальцев должны скользить по ребрам предметного стекал, создавая равномерное движение.
Если трясется рука пли ее движения временами приостанавливаются, мазок получается волнообразный, испещренный полосами. При медленном проведении шлифованного стекла о предметное лейкоциты распределяются неравномерно в мазке, при нажимании стекла па стекло травмируется много клеток. При уменьшении угла между стеклами большое количество лейкоцитов скапливается в конце мазка, а при увеличении угла мазок быстро обрывается и выходит слишком толстым и коротким. Поэтому предварительно первые мазки необходимо учиться делать в лабораторных условиях из нитрированной крови.
Мазки следует сушить на воздухе. При медленном его высыхании в холодную погоду можно предварительно стекла подогревать на грелке или крышке стерилизатора, наполненных теплой водой, или, взяв мазок пальцами за ребра, помахать нм по воздуху до исчезновения влажного блеска. Мазок должен высыхать быстро, так как иначе клетки сморщиваются, теряют свою форму. Наибольшая сохраняемость клеток наблюдается при обычном высыхании мазка без подогрева, при сухом окружающем воздухе. При работе со стерилизатором или грелкой надо следить, чтобы подогретые стекла были теплыми, но не горячими, от этого также травмируются клетки.
После высыхания мазка па его начальном верхнем конце простым карандашом или иглой маркируют инвентарный помер или кличку животного и дату приготовления мазка. Химическим карандашом или чернилами маркировать нельзя, так как при фиксации или окраске мазка краска от них расплывается по стеклу. При полном высыхании мазки можно переложить в коробку или завернуть в бумагу. При приготовлении мазков в сыром помещении лучше переложить их спичечками. При оценке качества мазка обращают внимание на длину, ширину, густоту мазка и равномерность распределения крови по стеклу. Хорошо приготовленный мазок должен быть тонким, ровным и при просмотре па снег отливать цветами радуги. В нем не должно быть разрывов, просветов, неравномерности распределения крови. По длине мазок должен занимать нс более 2/3 предметного стекла, а оканчиваться, свободно обрываясь, в виде бахромы. Oн должен быть же предметного стекла и располагаться посередине так, чтобы с обоих eго боков были свободные поля. Кровь не должна попадать под шлифованное смокло, а должна тянуться за ним, не подвергаясь травмированию (рис. 14).

Приготовление цитологических препаратов, методы их фиксации и окраски

Шлифованное стекло можно купить пли изготовить самим путем шлифования конца стекла с оторванными углами о предметное стекло.
В теплое время года мазки необходимо оберегать от мух, которые, съедая кровь, оставляют на мазке точечные пустоты. При приготовлении мазков па плохо обезжиренных стеклах или взятии крови из неочищенного уха, по которому расплывается капля крови, также образуются жировые точки па препаратах.
В холодное время года при приготовлении мазков следует защищать их от действия паров воды, так как конденсирующиеся на холодной поверхности стекла пары быстро тем оптируют мазки. Приготовленные мазки надо оберегать от действия влаги, паров кислот, щелочей, дыма, различных газов и т. д., так как все это сильно отражается на окраске, делая непригодными хорошо приготовленные мазки.
Для общего обзора крови иногда используют нативные препараты. Для этого готовят так называемую висячую каплю. Предметное стекло с шлифованной луночкой накладывают на покровное стекло с каплей крови, смешанной с каплей физиологического раствора, и, быстро перевернув его, исследуют под микроскопом при малом и большом увеличении. Чтобы капля крови не растекалась, края лунки предметного стекла следует смазать топким слоем вазелина. В висячей капле можно увидеть измененные формы, величину эритроцитов и характер образования монетных столбиков.
Приготовление мазков из пунктатов кроветворных органов. Пунктат из костного мозга, селезенки и лимфатических узлов выливают па парафинированное часовое стекло и быстро готовят мазки для подсчета цитограмм, заполняют смесители или пробирки Флоринского для подсчета количества ядерных элементов и эритроцитов, заряжают гемометр для определения содержания гемоглобина.
Парафинированное стекло, как и 3,8%-ный раствор лимоннокислого натрия для орошения иглы и шприца, применяют с целью предотвращения быстрого свертывания пунктата. Время свертывания пунктата у животных различно. У одних свертывается тут же, а у других — в течение 1—2 мни. Чем меньше примесь крови, тем быстрее свертываемость пунктата.
При приготовлении мазков го пунктатов кроветворных органов следует шлифованное стекло проводить по предметному стеклу медленно в противоположность приготовлению мазков крови, чтобы избежать травмирования молодых легкоранимых клеток.
В холодных и сырых помещениях мазки готовят па предметных стеклах, подогретых до 20 —25 °С, во избежание деформирующего влияния па форменные элементы пунктата температурного фактора. Для подогрева стекол применяют грелку пли стерилизатор с горячей водой.
При хорошей аспирации и минимальной примеси периферической крови в пунктате костного мозга содержатся глыбки, т. е. мельчайшие кусочки. Пунктат переносят па предметное стекло и ставят его наклонно так, чтобы кровяная жидкость стекала вниз. Стекающую жидкость можно отсасывать фильтровальной бумагой. Приготовленный мазок го оставшейся па предметном стекле густой массы богат костномозговыми элементами. Хорошие мазки имеют глыбчатый вид и содержат множество пустых мест, указывающих па содержание жира в пунктате. Глыбки чистого мозга остаются также па стенке цилиндра шприца при его опрокидывании и стекании с него жидкой части.
При изучении цитологических препаратов, мазков-отпечатков успех исследований зависит от способа взятия материала и окраски препаратов. При широких и однородных раневых поверхностях отпечатки получают путем прикладывания стерильных предметных стекол к ране. При патологоанатомическом вскрытии не позже чем через 6 ч из свежевырезанного кусочка органа также путем прикладывания стеклa готовят мазки-отпечатки. Чаще всего пользуются тампонными отпечатками. Из стерильной ваты готовят тампоны с гладким мягким концом и перед употреблением стерилизуют в автоклаве. C легким нажимом перпендикулярно прикладывают к ране или кусочку органа тампон, затем с тампона делают мазки па стекле мягким, без нажима, прижатием тампона к стеклу. На одном стекле можно делать несколько рядов отпечатков с различных участков рапы или органа. Полученные препараты метят восковым карандашом и высушивают. Фиксацию и окраску производят обычными способами. При изготовлении диагностических препаратов-отпечатков с лимфатических узлов, селезенки, печени и опухолевых образований можно обнаружить тонкие цито-морфологические изменения, злокачественные клеточные элементы.
Фиксация мазков. Закрепление клеток крови па стекле в таком виде, чтобы форма и структура их не изменялись, достигают с помощью различных химических препаратов. Нефиксированные мазки при долгом хранении теряют способность воспринимать краску. Поэтому рекомендуется мазки фиксировать не позднее чем через 1 сут после приготовления, а окрашивать не позже 2 3 нед. Свежие мазки окрашиваются намного лучше, и клетки хорошо дифференцируются по цвету ядер и протоплазмы.
Мазки, приготовленные при минусовой температуре, после просушки на воздухе надо опустить в фиксатор. При перенесении в теплое помещение без фиксации они быстро потеют, эритроциты гемолизируются.
Для фиксации применяют специальные фиксажницы, аппарат для гемоисследований или обычный химический стаканчик, куда вертикально попарно ставят мазки так, чтобы они не соприкасались друг с другом лицевой стороной. Во время фиксации стакан или фиксажницy закрывают от доступа воздуха. После попечения срока фиксации мазки вынимают и ставят вертикально для просушки на специально изготовленные для этого доски. Из существующих многочисленных реактивов для фиксации мазков крови и пунктатов кроветворных органов наилучший — метиловый спирт.
Метиловый спирт (абсолюте чистый) должен быть совершенно бесцветным и храниться в посуде с плотно притертой пробкой. В противном случае спирт поглощает влагу из воздуха и теряет качества безупречного фиксатора. Продолжительность фиксации 3—5 мни. В 100 мл спирта можно фиксирован, 100—150 мазков. При помутнении и загрязнении спирт становится непригодным для дальнейшего у потребления. При качественном спирте мазки крови после взятия их из фиксажницы моментально сохнут. При отсутствии метилового спирта можно применять следующие фиксаторы: смесь Никифорова из равных частей абсолютного этилового спирта и эфира (продолжительность фиксации 15—20 мин); абсолютный этиловый спирт (15—20 мни); метиловый спирт плюс ацетон (5 мин); ацетон (5 мин); денатурированный спирт (15 мин); 1%-ный раствор осмиевой кислоты (1/2—1 ч) и 1%-ный спиртовой раствор формалина (продолжительность фиксации 1 мин). Денатурированный и этиловый спирты дают много артефактов.
Нeйтpaлизация воды. Для разведения красок необходимо употреблять воду, близкую к нейтральной реакции (рH 6,8). Даже небольшое присутствие кислоты или щелочи в воде в сильной степени сказывается па прокрашивании клеточных элементов мазка. При кислой реакции воды мазок недокрашивается, а эритроциты окрашиваются в красный цвет, общий фон мазка красноватый. При щелочной реакции воды, наоборот, мазок перекрашивается, на вид —препарат синего цвета. В синий цвет окрашиваются также эритроциты старых мазков.
Реакция дистиллированной воды обычно бывает слабокислой, а водопроводной — часто щелочной. Поэтому для приготовления рабочего раствора краски берут определенные соотношения той и другой воды, чтобы показатель pH был ближе к нейтральному. Это получают при использовании в разных соотношениях количества дистиллированной и водопроводной воды при пробной окраске нескольких мазков.
Для более качественной окраски мазков лучше воду нейтрализовать. Для определения реакции (pH) в два чистых стаканчика наливают немного (5—10 мл) испытуемой дистиллированной воды. В один из них кладут несколько крупинок порошка краски гематоксилина и набалтывают воду, а второй стакан контрольный. Если реакция воды нейтральная, то не раньше чем через 1 мни и не позже чем через 5 мин вода приобретает слабый розово-фиолетовый оттенок. Если реакция воды кислая, то такой оттенок не появится совсем или появится не позже чем через 5 мни. При щелочной реакции вода этот оттенок станет заметным уже раньше чем через 1 мин.
При щелочной реакции вода в нее добавляют несколько капель заранее приготовленного 1%-ного раствора уксусной кислоты. Если реакция вода кислая, то добавляют 1%-ный раствор карбоната натрия. Затем воду снова испытывают гематоксилином и, если нужно, снова добавляют нужный раствор. Так поступают до тех пор, пока не установится необходимая реакция вода.
Эти способы просты, по требуют много времени. Поэтому желательно приготовить так называемый буферный раствор. В дистиллированную воду добавляют смесь кислой и основной солей фосфатов натрия и калия, подобранную в соответствующей пропорции, что создает определенную концентрацию водородных гидроксильных попов.
Заготовляют с большой точностью два раствора буферных солей (фосфатов): дигидрофосфат натрия (Na2HPO42H2O) в количестве 17,814 г на 1 л (pH 8,302); моногидрофосфат калия (KH2PO4) в количестве 13,638 г на 1 л (pH 4,529). Смешивая растворы фосфатов натрия и калия в разной пропорции согласно ниже приведенной таблице 1, получают смесь нужной реакции. Лучшая реакция для окраски мазков крови устанавливается при смешивании равного количества первого и второго растворов, при этом pH смеси будет равен 6,813. Растворы фосфатов следует хранить в темном месте и для их консервации добавлять тимол.
Приготовление цитологических препаратов, методы их фиксации и окраски

На 1 л воды вполне достаточно 10 мл смеси фосфатов. Для лучшей окраски приготовление рабочих растворов и ополаскивание окрашенных мазков необходимо производить буферным раствором с pH 6,9. Для этого готовят два раствора: 9,073 г дигидрофосфата натрия (Na2HPO4) растворяют в 1 л дистиллированной воды; 9,465 г моногидрофосфата калия (KH2PO4) растворяют в 1 л дистиллированной воды. При смешивании двух частей первого раствора с восемью частями второго получают буферный раствор с pH 6,9.
Окраска мазков. Для получения хорошей окраски необходимо придерживаться следующих правил.
1. Посуда должна быть абсолютно чистой, сухой и не использоваться для других целей. После окончания окрашивания нужно сразу же мыть посуду, лучше в дистиллированной воде. Даже следы кислот, щелочей и других реактивов па посуде не позволяют получить хорошую окраску мазков. На их окрашивание, а также па уже окрашенные мазки отрицательно действуют пары формалина и других пахучих реактивов в помещении. Поэтому в гематологической комнате не следует хранить подобные реактивы.
2. Краски необходимо беречь от света, тепла, холода, паров кислот и щелочей, перед употреблением не взбалтывать. Качество новой партии краски следует предварительно проверить путем окрашивания 2—3 мазков, установить pH и пригодность ее для использования.
3. Для сушки окрашенных мазков не рекомендуется применять фильтровальную бумагу, их необходимо сушить па воздухе в вертикальном положении. При храпении открыто па воздухе мазки могут выцвести или посипеть (в зависимости от pH воздуха помещений), поэтому лучше их после окраски и высушивания сложить в коробку или завернуть в бумагу, прикладывая к лицевой стороне мазка тыльную сторону последующего. Принцип всех предложенных окрасок основан в первую очередь на химическом родстве различных составных частей клетки с определенными красящими веществами, особенно с анилиновыми красками. Ядро, содержащее в значительном количестве нуклеиновые кислоты, которые связывают главным образом основные краски, является базофильным. Цитоплазма одних кровяных клеток (например, ортохромные нормобласты, эритроциты и др.) оксифильна, т. с. поглощает преимущественно кислые краски, других (молодые формы, лимфоциты) — базофильна.
Включения в цитоплазму имеют различную окраску в зависимости от родства с тем или иным красителем. Если они воспринимают оба красителя одновременно, то окрашиваются метахроматически.
К основным гематологическим краскам относятся метиленовый синий и его производные — азур I (метиленовый азуровый) и азур II (смесь равных частей азура I и метиленового синего), к кислым — водорастворимый желтый эозин.
Наиболее распространенными являются окраска по Романовскому — Гимза, Паппенгейму, Май — Грюнвальду, Нохту, Лейшману, ускоренная окраска по Романовскому, специальные методы окраски по Фрейфельду, окраска для подсчета тромбоцитов.
Окраска по Романовскому — Гимза. Pacтвop можно приготовить из сухой порошкообразной краски. Однако лучше использовать готовую жидкость заводского изготовления (жидкую краску). Готовая краска состоит из азура II (равные части азура I и метиленового синего) — 3 г, эозина В (желтый) — 0,8 г, глицерина — 250 мл и метилового спирта — 250 мл.
Рабочий раствор готовят из расчета полторы-две капли готовой краски на 1 мл дистиллированной воды (кислотность нейтральная) или 5 мл краски на 100 мл воды.
Раствор краски мелкой струей осторожно наливают по стенке в стакан с водой, все время перемешивая путем взбалтывания вода, чтобы избежать выпадения краски в осадок. При выпадении краски в осадок (что определяется по наличию крупинок краски па дне раствора) мазки окрашиваются долго и некачественно. Продолжительность окраски 20— 30 мин, после чего мазки промывают под слабой струей воды и ставят дня сушки па воздухе узким ребром на доску с желобами, не касаясь препарата руками. Следует иметь в виду, что продолжительность окраски зависит как от концентрации раствора (сколько капель краски взято на 1 см3 воды), так и от температуры воды и окружающего воздуха. Чем холоднее помещение и растворы, тем продолжительнее окраска. Поэтому через 20 мин рекомендуется контролировать процесс окрашивания путем просмотра мокрых мазков под малым увеличением (окуляр х7, объектив х40) микроскопа. Если четко видны эритроциты, ядра лейкоцитов красно-фиолетового цвета, цитоплазма голубого или светло-синего, то можно считать мазок окрашенным. Каждую партию новой краски предварительно необходимо проверить па активность. Для этого берут краску разной степени разведения и красят по одному мазку. Затем под микроскопом определяют, при каких концентрациях получена наилучшая окраска мазка.
При качественной окраске мазков ядра лейкоцитов должны быть окрашены в красно-фиолетовый цвет, а цитоплазма — в голубой. Цитоплазма нейтрофилов слегка розовая или светлая с мелкой зернистостью. Зернистость эозинофилов ярко-розовая, цитоплазма моноцитов — голубовато-сероватая. Нейтральная и кислая среда красок окрашивает эритроциты в розовый, а щелочная — в голубоватые цвета. Спице топа мазков указывают на щелочность, красные — на кислотность вода. Перекрашенные мазки можно частично восстановить, прополоскав их в этиловом спирте.
Окраска по Романовскому — Гимза позволяет хорошо дифференцировать ядро, по гораздо хуже — нейтрофильную зернистость цитоплазмы, поэтому его широко используют только для окраски мазков периферической крови.
Техника окрашивания мазков следующая:
- мазки кладут узкими ребрами (лицевой стороной вниз) на две спички или стеклянные палочки в чашку Петри и наливают приготовленный рабочий раствор краски. Раствор краски наливают нс па мазок, а под него с той целью, чтобы выпавший осадок краски оседал на дно чашки и не пачкал мазок;
- для окрашивания большого количества мазков применяют кювету, на дно которой кладут лист стекла, а на него — узкие стеклянные полоски. На эти полоски в несколько рядов кладут препараты вниз мазками и с одного конца под них заливают раствор. Таким способом единовременно можно окрасить 50 и более мазков. Важно следить, чтобы под мазки пс попали пузырьки воздуха, так как эти места останутся недокрашенными. Поэтому вначале между мазками оставляют щели, а после того, как влит раствор, их передвигают вплотную друг к другу. Время окраски также контролируют под микроскопом. Для массовой фиксации и окраски мазков применяют специальный аппарат, который состоит из двух полиэтиленовых стаканчиков со штативами для укладки мазков. Один из стаканчиков со штативом используют для фиксации, а другой — для окраски мазков.
Хорошо отмытый мазок высушивают в вертикальном положении и затем на несколько секунд погружают в спирт для лучшей дифференциации ядра. Не смывая спирт, препарат быстро высушивают и исследуют под микроскопом. Недоокрашенные препараты, а также мазки, обработанные не свободной от кислот дистиллированной водой, имеют красный оттенок на поверхности.
Окраска по Паппенгейму. На нефиксированный мазок наносят 1—2 мл готовой краски Май — Грюнвальда, представляющей собой раствор эозиновокислого метиленового синего (0,5 мл) в метиловом спирте (100%) плюс чистый глицерин (50 мл). По истечении 3 мин к краске добавляют равное количество дистиллированной воды и продолжают окрашивать еще 1—2 мин. После этого краску смывают и мазок докрашивают свежеприготовленным раствором краски Романовского — Гимза в течение 10—15 мин. Этот метод считается наилучшим, особенно для изучения топкой структуры клеточных элементов крови и кроветворных органов. В цитологических препаратах кроветворных oрганов хорошо выявляются цветовые оттенки ядер и цитоплазмы, характерные для отдельных видов клеток. Преимущество этого метода заключается также в том, что краска Май — Грюнвальда содержит метиловый спирт, поэтому одновременно происходят фиксация и окраска.
Окраска пo Maй — Грюнвальду. На фиксированный мазок наливают 1—2 мл готовой краски Май — Грюнвальда пополам с водой. Через 2—3 мин мазок промывают водой и докрашивают по Романовскому — Гимза в течение 10—15 мин.
Окраска по Hoxтy. Предварительно готовят две краски: 0,1%-ный водный раствор основной краски азура II и 0,1%-ный водный раствор кислой краски желтого эозина (т. с. по 1 г сухой краски на 1 л дистиллированной воды, лучше с нейтральным pH). Краски готовы к употреблению через 2 нед после приготовления. Их следует хранить вдали от кислот и щелочей.
Для окраски фиксированных мазков готовят рабочий раствор краски из расчета две части раствора эозина, три части раствора азура II и пять частей воды. Красят в течение 20—25 мин.
Окраска по Нохту — более простой и удобный метод. Хорошо выявляет специфику каждой клетки, дифференцирует ядро. Применяют дня окраски мазков крови и костномозгового пунктата.
Окраска по Лейшману. На нефиксированный мазок наливают пять — десять капель готовой краски Лейшмана (смесь азура I, метиленового синего, желтого водорастворимого эозина в количестве 0,2 г на 10 мл абсолютного метилового спирта) на 3 мин. Затем приливают пять — десять капель дистиллированной вода на 4—5 мин, осторожно перемешивая. Первые 3 мин при использовании неразбавленной краски происходит фиксация, а разбавленной — окрашивание мазка. После смыва раствора краски мазок на 2—3 мин остается под слоем дистиллированной вода, затем сушится на воздухе. Мазок имеет красно-фиолетовый оттенок.
Ускоренная окраска но Романовскому. На свежий нефиксированный мазок наносят 15—20 капель смеси в равном количестве концентрированного раствора краски Романовского — Гимза и ацетона. Через 1 мин, осторожно перемешивая, добавляют 1—2 мл слабощелочной дистиллированной воды. Через 5—10 мни препарат ополаскивают и высушивают.
Окраска для выявления базофильной зернистости эритроцитов. Базофильная зернистость эритроцитов выявляется и в мазках крови, окрашенных обычным способом по Романовскому — Паппенгейму, по лучше метиленовым синим.
Окраска метиленовым синим. Мазок фиксируют 3 мин в метиловом спирте, затем после высушивания заливают краской (пять капель 1%-ного водного раствора метиленового синего па 20 мл водопроводной вода) на 1 ч. Краску сливают, мазок высушивают. При этом базофильная зернистость в эритроцитах приобретает фиолетово-синий цвет.
Обычно считают 10 000 эритроцитов и отмечают количество эритроцитов с базофильной зернистостью. Данный метод позволяет выявить также наличие полихроматофилии и плазмодиев малярии.
Окраска но Фрейфельду. К 20 мл воды прибавляют семь капель фуксина Циля, пять капель 1%-ного раствора метиленового синего и тщательно перемешивают. Смесь наливают па фиксированные сухие мазки на 1 ч, после чего смывают водой и просушивают. При таком способе окраски удается выявить так называемую токсическую патологическую зернистость в цитоплазме нейтрофилов в виде синеватых зернышек, что наблюдается при некоторых инфекционных заболеваниях.
Окраска для подсчета тромбоцитов. При окраске мазков для подсчета тромбоцитов можно применять тот же метод Романовского — Гимзы или Нохта, по длительность окраски увеличить до 1,5 — 3 ч. Тромбоциты лучше окрашиваются, если краски эозин и азур разводят в 1%-ном содовом растворе, при этом способе длительность окраски сокращается до 45—60 мин.

Источник: http://handcent.ru/veterinarnaya-gematologiya/3190-prigotovlenie-citologicheskih-preparatov-metody-ih-fiksacii-i-okraski.html


Рекомендуем посмотреть ещё:


Закрыть ... [X]

Серебряная вода в домашних условиях: как сделать Поделка на тему кукла



Щёлочная вода приготовление в домашних условиях Структурированная вода в домашних условиях
Щёлочная вода приготовление в домашних условиях Повышенная кислотность лечение народными
Щёлочная вода приготовление в домашних условиях Живая и Мертвая вода применение
Щёлочная вода приготовление в домашних условиях Асцит, брюшная водянка у собак и кошек. Лечение асцита у
Щёлочная вода приготовление в домашних условиях Будь здоров, Калуга! Портал о здоровье и здоровом
Щёлочная вода приготовление в домашних условиях ВЯЗАНИЕ СПИЦАМИ
Щёлочная вода приготовление в домашних условиях Валентина Беляева. Я свяжу тебе жизнь. fo
Воспаление десен: что делать для лечения Аденто. ру Выкройка Наборы Игрушка Волховская Бечевка ГОСУДАРСТВЕННОЕ БЮДЖЕТНОЕ Как сшить детское покрывало Звездная фантазия Красноухая черепаха в домашних условиях Медальки для награждения Наборы для вышивания бисером - купить по низким ценам с Плуг со сцепкой для мотоблока Агро (Агрос)

ШОКИРУЮЩИЕ НОВОСТИ